服务流程

Progress


  • 检验流程
  • 申请单填写

  1、检验申请人资质:客户医院应确保从事检验申请的人员,具有国际要求的相关资质(如:执业医师证等),并保存相关资质证明。

  2、病人身份识别信息:申请者必须清楚填写病人的姓名、性别、年龄、或其它有效识别身份的编号。

  3、病人的简历信息:申请者必须清楚填写病人所在临床科室名称、病历号、床号、临床诊断、临床资料(如用药史)、临床样本、样本的采集日期和时间、采集者姓名、申请者姓名、申请检验日期。

  4、申请的检测项目:申请这必须清楚填写检测项目名称,项目名称应规范、准确,特别是申请组合项目时,一定要与本中心检测项目的组合内容一致。

  5、申请单特定要求:如药物浓度检测申请者须提供药物服用剂量、时间,标本采集时间,便于临床医生能容易和准确判断药物浓度随服用剂量与时间的变化关系。

  6、项目加做时限:在样本有效保存期间和检测结果不受影响的情况下,客户可申请加做项目,具体项目加做的流程见“项目加做的处理流程”;

7、修改报告单病人姓名:因字迹不清要求修改的由客服直接修改,如果与原申请单上的名字出入很大的要求修改,需要提供医院证明!

(三)检验标本的采集和送检

标本送检的基本原则:

①准确、全面、清楚地填写检验申请单和检验项目。

②根据检验项目准确选择收集标本的容器,1张条形码对应1份标本。

③留取、采集标本前后仔细认真核对患者姓名、标本容器及病例号与条码信息是否一致。

④标本采集后盖盖儿并按照标本贮存要求立即送检,尽量减少标本贮存和运输时间。

⑤请勿利用患者申请单送检他人标本,这样会造成难以查找原因的错误,甚至严重误导诊疗过程。

⑥标本采集送检见《临床检验中心检测项目一览表》。

1、血液标本的采集

(1)静脉血标本   

    采集方法:静脉血标本是采用一次性注射器(推荐使用真空采血技术),从患者肘静脉或其它部位的静脉取血。

    采集静脉血标本前医生注意事项:

    ①在含有葡萄糖或电解质(含钾、钠、氯离子)的肌肉注射或静脉输液时,建议3小时以后方可采集静脉血标本进行这些项目的检验,以防止上述检验项目因输液引起的假性升高。如因抢救等原因需要在输液同时采血者,一定要在输液对侧采集标本,医生应正确评价检测结果。禁止从中心静脉插管、肝素帽等保留的治疗通道中采集血标本。

    ②止血带使用时间应少于1分钟(建议在针头穿刺进入血管后即可放松止血带),以免引起血液淤滞,局部组织缺氧,造成血液某些成分的改变,特别是测定乳酸时不可使用止血带,否则结果偏高。

    ③血标本应防止溶血。引起溶血的原因与患者本身有一定的关系外,还有:A. 注射器采血时抽吸力太大;B. 混匀标本时过度振荡;C. 全血放置时间长或突然冷却或受热;D. 注射器中的血沫注入试管;E. 标本离心时离心力过大等。

因血液中红细胞内外成分有很大差异,溶血可造成红细胞内的物质向细胞外转移,如K、Mg2+和某些酶类(LDH、AST、ALT、ACP);另外,溶血还可干扰某些化学项目(如TBil、DBil、TC等)的测定,严重影响结果的准确性。

    ④正确选择采血管。通常情况下临床化验多采用血清作标本(不抗凝红帽管),但一些特殊检验项目需要使用抗凝剂时,应注意选择合适的抗凝剂并注意抗凝剂与血液的比例,以防止标本凝血或红细胞形态的改变;抗凝血标本采集后立即轻轻摇匀(上下颠倒8次),以防凝血发生。正确采血管选用请参照《临床检验中心检测项目一览表》。

    ⑤多项化验采血顺序:紫帽管(血常规,EDTA-K2抗凝管)→蓝帽管(凝血检查,枸橼酸抗凝)→绿帽管(血流变检查等,肝素抗凝)→黑帽管(血沉等项目检查)→红帽管(生化检测)→黄帽管(免疫检测)。注意:抽取血常规标本后针头有可能污染K,紧接着抽取血钾标本时影响钾的测定结果。在仅做血常规和电解质检查时,可以先采红帽管(生化管)。

    ⑥注意标本存放环境温度最好在20~30C;标本应避免日光直接照射,防止如胆红素、尿酸等对紫外线敏感的物质浓度降低;标本采集后应尽快送检。

采集静脉血标本前病人注意事项:

    ①避免剧烈运动  强烈肌肉运动明显影响体内代谢,引起血中某些成分浓度的改变,如乳酸、CK、AST、LDH、ALP等升高,故一般主张抽血前24小时内不做剧烈运动。清晨取血,住院病人可在起床前取血,匆忙赶到门诊的人应至少休息15分钟后取血。

    ②注意合理饮食  除了急诊或其它特殊原因外,一般主张正常饮食3天后采血,应避免暴饮暴食及刻意控制饮食。应在空腹10-14小时后第二天清晨采血。餐后或延长空腹时间(饥饿)均可引起血液化学成分的改变。餐后血糖、血钾、碱性磷酸酶及甘油三酯通常升高,无机磷降低;饥饿时血糖及蛋白质降低、胆红素升高;另外饮食的量及质对检验结果也有影响,如高蛋白饮食可使血清尿素、血氨、尿酸升高;高脂肪饮食引起乳糜微粒血症,导致血清脂血(混浊);饮水过多或过少可使血清稀释或浓缩;含咖啡因的饮料可使儿茶酚胺释放等。

    ③饮酒的影响  立即影响的是血清乳酸、尿酸升高;连续饮酒AST、ALT上升,而γ-GT上升最为明显。长期饮酒者往往有高甘油三酯血症,γ-GT也会长期不正常。

    ④避免紧张与情绪激动  否则可以影响神经-内分泌功能检验项目,白细胞计数升高。急促呼吸可使血清乳酸等升高。

    ⑤药物影响   很多药物可使某些化验项目的结果增高或降低,如咖啡因可使血糖和胆固醇增高;冠心平可使甘油三酯和乳酸脱氢酶减低;维生素C可使乳酸脱氢酶减低;口服避孕药可使转氨酶升高等。故病人在化验前应尽可能停服对检验有干扰的药物。

    ⑥取血时体位的影响  体位(站立、坐位、卧位)改变可以引起某些化验指标的显著变化,故建议住院患者以卧位最佳,门诊患者安静后以坐位取血为宜。

(2)动脉血标本(大部分用于血气分析检查)   

    采集方法:动脉血标本采集使用一次性肝素化注射器,从患者股动脉、肱动脉或桡动脉取血,血抽出后用一块小橡皮封针头以隔绝空气,并将注射器放在手中双手来回搓动,使血液和抗凝剂充分混匀,立即送检。

    注意事项:

    ①抽血过程中出现的小气泡须在抽血后立即排出,切记隔绝空气是极重要的,因空气中的氧分压高于动脉血,二氧化碳分压低于动脉血。根据气体规律,高分压流向低分压,从而使血液中pO2及pCO2都改变而无测定价值。

    ②标本应立即送检。血液不得放置过久,因为血细胞还在继续新陈代谢,使pH及pO2下降,pCO2上升,影响数据的准确性。

(3)血培养标本  

    采集方法:防止皮肤寄生菌或环境微生物的污染是血培养的关键。因此,采血时严格执行消毒程序,用注射器抽取患者静脉血,成人每次采集8-10ml,婴儿和儿童1-5ml。血样注入血瓶,要迅速轻摇,混合均匀,防止凝固。接种血样的培养瓶应立即送检,绝对不能放冰箱保存。

    注意事项:

    ①条码显示的患者信息要完整

    ②标本采集时间应在病人发热初期,并且尽量在用抗生素之前,只有这样才能得到较高的阳性率。若已用药最好在下次用药前采集标本。

    ③注意血培养瓶的选择。常规用为普通细菌需氧瓶,已使用抗生素的患者用加活性炭中和抗生素需氧瓶中。儿童血培养瓶 。

    ④大多数的菌血症是间歇性的,往往需要以反复多次血培养阳性来证实。

⑤实验室培养出细菌应及时反馈给临床,以使患者得到及时治疗,一般出报告时间为3~5天。

2、尿液标本的留取

(1)尿常规(RT)、尿沉渣

采集方法:取清洁干燥一次性尿杯一个(如在家中留取,容器应清洁干燥,不含任何药物),留取新鲜中段尿(连续排尿不中断,此时截取中段排的尿)作为送检样品约5ml,倒入一次性尿管内。标本均以清晨第一次为宜,清晨第一次尿液为浓缩尿,各种有形成分及激素(如HCG)含量较高,易于检出,尿常规也可随时留取。女性标本留取前最好清洁尿道口及外阴,同时避免经血、白带、粪便等混入污染;容器中应尽量避免药物和各种消毒剂的存在,防止破坏各种有形成分的形态及激素活性。

注意事项:标本留取后要及时送检,最长不要超过2小时,否则造成:

①尿中细菌生长繁殖:A. 尿素酵解,使尿pH升高,有形成分被破坏(管型分解、红细胞溶解);B. 葡萄糖被降解,使病理性糖尿消失;③细菌菌体蛋白与病理性蛋白尿相互干扰。

②尿中的化学成分(尿胆原)可因尿久置而变性、分解;尿中盐类因久置而析出结晶干扰显微镜检查,从而影响尿液的结果判断。

(2)24小时尿标本   

24小时尿标本可用于检测24小时尿电解质(K、Na、Cl)、Urea、Cr、Ca、P,24小时尿蛋白(Pro)定量等内容。

采集方法:准备清洁干燥大容器(最好有盖)。病人于清晨7时排尿弃去,以后每次尿均收集于容器中,至次日晨7时最后一次所排尿液也收入容器中送检,(也可自己将全部尿液充分混匀后测量尿液总量,取5ml左右倒入试管内送检)。

注意事项:标本留取过程中应避免污染,女性应避免经期,留取时清洁外阴。室温过高时应加入防腐剂,以减少微生物的生长。

(3)尿普通培养

    采集方法:准备无菌小瓶。成年女性先以肥皂水冲洗外阴,再以清水冲洗干净,用无菌纱布擦拭干净。病人排尿,先弃去前段尿,留取中段尿10ml。男性用肥皂水冲洗尿道口,后用清水冲洗,就可采取中段尿。包皮过长者,防止包皮内细菌污染,可将包皮翻开冲洗后,留取中段尿10ml。也可由护士完成清洁消毒工作。

注意事项:

①外尿道寄生有正常菌群,采集尿液时要注意无菌操作,避免污染。

②尿液标本采集后,必须立即送检,因为泌尿系感染的大多数病原菌,在室温放置一定时间即可增殖。尿液标本采集后,一般不能超过1小时,否则不应作为尿细菌培养标本。

③尿液标本采集后,如不能立即送检,必须保存4℃冰箱,但时间不超过8小时。

④注意尿中勿加防腐剂。

(4)抗酸染色

留尿前晚尽量少饮水。取清洁容器收集清晨第一次全部尿液或24小时尿液沉淀10~15ml送检。注意勿加防腐剂。

3、粪便标本的留取

(1)粪便常规(RT)及隐血(或称潜血,OB)试验

采集方法:用竹签挑取少许新鲜粪便(约蚕豆大小),应选择其中有脓血、粘液的部分或颜色异常部分,如无异常,则可自粪便表面不同部位及粪便深处多部位取材,放入干燥清洁有盖的便盒内立即送检。无粪便而又必须检查时可经肛门指诊获取粪便。灌肠后的粪便常因过稀及混有油滴等而不适于作检查标本。

注意事项:

①标本力求新鲜,采取标本后应立即送检,一定不要超过2小时。标本久置可因pH及消化酶等因素而使粪便中细胞成分分解破坏。

②标本中不可混有尿液,更不可从尿壶或便盆中采取粪便标本,因为尿液可使粪中柔弱的原虫致死,能使粪中胰蛋白酶活性检查结果增高。粪便标本中也不可混入植物、泥土、污水等,因腐生性原虫、真菌孢子、植物种子、花粉易混淆实验结果。

③粪便标本不应用卫生纸包裹,请直接装入蜡纸盒,以防水分丢失细胞被破坏。

(2)粪便寄生虫检查标本

检查寄生虫卵标本留取方法及注意事项同便常规检查。

检查阿米巴滋养体应于排便后立即从脓血性或稀软部分取材,迅速(2小时内)送检,患者在家中留取标本时,送检过程中应采取保温措施,因为阿米巴原虫可在低温下失去活动力从而不宜查到。检查蛲虫卵时,在清晨排便前自肛门四周皱襞处拭取标本,立即(2小时内)送检。

(3)粪便培养标本   

准备无菌便盒。采集新鲜粪便,采集标本过程应尽量无菌操作。

①自然排便采集法:在清洁便盆内排便后,用竹签挑取含脓血或粘液部分的粪便(约栗子大小,2~3g;液体粪便取絮状物2~3ml),放置清洁容器送检。注意所挑取的大便不应接触其它部位,如便盆。

②直肠拭子法:如不易获得粪便,或排便困难的患者及幼儿,可采用直肠拭子法采便。将拭子前端用无菌甘油或等渗盐水(0.9%氯化钠)浸润,然后插入肛门4-5厘米(幼儿约2-3厘米)处,轻轻在直肠内旋转,沾取直肠内黏液后取出,放入无菌试管或保存液中送检。

注意尽可能在使用抗生素之前收集粪便,粪便标本中不可混入尿液及其它化学异物等。标本采集时要留取对疾病诊断有意义的部分,如腹泻病人,脓血便取脓血部分对细菌性痢疾诊断意义重大;稀便或水样便患者大便,取水样部分直接涂片暗视野显微镜下观察细菌动力,对弧菌类感染有一定意义。

4、痰液标本的留取

(1)痰涂片及痰培养

采集方法:准备无菌痰盒或痰杯。一般检查应采集清晨第一口痰为宜。患者晨起在留取痰液标本之前,用清水反复漱口,然后深吸气用力咯出气管深处1-2口痰液(不要从咽部或口腔咳出的痰),盛于无菌痰杯内,盖紧盖,立即送检(不应超过2小时),以免细胞和细菌自溶。

注意事项:注意标本内切勿混入唾液及鼻咽分泌物。对无痰、少痰或痰脓不易咯出者,可雾化吸入45C加温生理盐水(0.9%NaCl)后留取;对于小儿可轻压胸骨柄上方以诱导咯痰。

5、前列腺液标本

采集方法:医生通过肛门指诊,用前列腺按摩法采集前列腺液。直接将前列腺液(第一滴弃去)滴于载玻片上及时送检。如需做细菌培养,应先消毒尿道口(方法详见尿培养标本采集),用无菌干燥容器收集标本。一次按摩失败或检验结果阴性,如有临床指征,需隔3~5天后再重复按摩。

6、脑脊液标本

采集方法:脑脊液标本一般由医生通过腰椎穿刺术(腰穿)获得,特殊情况下可采用小脑延髓池或脑室穿刺获得。采集的脑脊液分别收集于3支无菌试管内,每支1-2ml,分别用于细菌学、生化及免疫学和细胞学检查。

注意事项:注意标本采集后应立即送检,以免放置过久细胞破坏,影响细胞计数及分类;葡萄糖分解,病原菌破坏或溶解,影响细菌检出率;凝块形成,影响细胞计数等等;更不可置冰箱保存,否则会使病原菌死亡,尤其是脑膜炎奈瑟菌、肺炎链球菌及流感嗜血杆菌。

7、阴道分泌物标本   

采集方法:阴道分泌物俗称“白带”,由医生借助阴道窥器,于阴道后穹隆采集,并将阴道分泌物用生理盐水涂片后立即高倍镜检查其清洁度;革兰氏染色油镜查找淋病奈瑟菌、白色念珠菌、阴道加特钠菌等。阴道滴虫在25~42C下可活动,故标本应保温送检。沙眼衣原体直接涂片需用无水乙醇固定后送检。

8、羊水标本   

采集方法:医生通过羊膜腔穿刺术获得羊水标本。

羊水抽取后应立即送检,以免细胞成分崩解,化学成分及酶类的变质和失活。中期妊娠的羊水细胞,可作染色质检查、细胞培养、染色体核型分析或先天性代谢缺陷病检查;晚期妊娠的羊水沉渣,多作含脂肪细胞及其他有形成份的检查。

9、浆膜腔积液标本   

采集方法:浆膜腔积液由医生采用穿刺术而获得。

细菌培养及药敏试验:用无菌小瓶留取标本,加盖送检。常规和生化检查:建议使用肝素锂抗凝采血管(绿帽管),以避免凝块形成、细胞发生变性、破坏而影响结果。标本应及时送检,放置过久细胞发生变性、自溶。

(四)标本处理

1、标本检查:

  样本到达实验室后,工作人员应对标本进行检查验收,如样本条形码是否与检验申请单一致、样本状态如溶血、脂血情况,抗凝血有无凝块,样本类型是否相符等,不合格样本需马上作相应处理。否则会影响检测结果的准确性。

2、标本处理:

  实验室接受标本后应尽快给予分类和离心。如取血后未尽快转送或分离血清、血浆,血清与血细胞长时间接触可发生以下变化:

(1)由于血细胞的酵解作用,血糖以每小时5%~15%的速率降低,即使在真空采血管中在较低温度下每小时也会降低1.9%,糖酵解产物乳酸和丙酮酸升高。

(2)由于红细胞膜通透性增加和溶血加重,红细胞内化学成分发生转移和释放,酶活性受影响,血清无机磷、钾、铁、乳酸脱氢酶、天门冬氨酸转移酶、肌酸激酶等升高。  

(3)由于酯酶作用,胆固醇酯因分解而减少,游离脂肪酸增加。

(4)酸性磷酸酶测定血标本室温放置1~2h测定结果降低50%。

(5)电解质测定血标本未及时分离血清和血浆,可导致血钾测定结果偏高。

  处理要求:

  ① 促凝标本采血后5~1 5 min尽早处理;

  ② 抗凝标本可采血后立即离心;

  ③ 非抗凝(无促凝)标本采血30~60min后离心;

  ④ 抗凝全血标本(全血细胞分析、ESR、TnT等)不需要离心。

3、标本拆分与标识:

  根据检测的要求,转移原样本中部分样本到新的容器,作其他检测用途。本实验室的一般知道原则如下:

(1)标本拆分前先审核样本与检验单的条形码是否一致,再次确认样本是否需要拆分;

(2)拆分管必须干净,最好使用一次性干净试管,以免影响标本的检测质量;

(3)拆分操作:

  A:标本拆分时,使用一次性加样枪头吸取原始标本管标本到一次性干净试管中,并盖上干净试管塞。每个标本使用一个枪头,不同标本间枪头不能混用,防止交叉感染。

  B:细菌培养等标本应尽量避免拆分,确实需要拆分时应避免细菌感染。

  C:为防止生物危害及溅出与泼洒,或对工作人员的损害,需采取防范措施,如在通风厨操作、或戴口罩与眼罩、或隔者挡扳操作等。

  • 标本交接

本中心工作人员与客户当场交接标本,履行交接程序。不合格的标本当场拒收,对有疑义的标本 ,与客户协商后处理。

  • 标本保存

标本采集后应尽快送至实验室,若不能及时送检,已采集的标本要按检验规定的贮存条件,如室温、冷藏、冰浴、温浴或防腐贮存,将标本直立置于稳定、干燥、 避光、密闭的环境中,避免振摇,以免标本渗漏或溶血影响检测结果。血液标本采集后应及时分离血清或血浆,否则可发生红细胞与血清之间成分的相互转移,或红 细胞中的某些酶分解待测物等,从而影响检验结果。中心已检标本的保存条件和保存时间明细表请见附录:

(1)一般标本为室温(最好是22~25℃)放置;冷藏标本(对温度依赖性分析物)应保持2~8℃直到温度控制离心。32

(2)采血管应管口(盖管塞)向上,保持垂直立位放置。

(3)采血管必须封口:管塞移去后会使血PH改变,影响结果,如可使PH、Ca2+增高,使ACP减低;封口可以减少污染、蒸发、喷溅和溢出等。

(六)标本运输